在常見的試劑實驗中，我們經常會用到血清作為實驗樣本，那么血清的血涂片的質量控制是zui緊要的一步，以下要求少一步都不行。
1．血膜片的質量要求是厚薄均勻適度，低倍鏡下觀察全片，細胞不重疊，頭尾及 兩側有一定的空隙，血膜頭部有明確的病人標志。
2．些體積較大的特殊細胞常在血膜的尾部出現，因此蠟筆劃線時應注意保存血膜 尾部細胞，血膜必須充分干燥，否則在染色過程中容易脫落。
3．配制染料須用甲醇，稀釋染液用緩沖液，因為緩沖液的pH 對細胞染色的影響很重要。在偏酸性環境中正電荷增多，在偏堿性環境中負電荷增多，又因為細胞著色 對氫離子濃度十分敏感。如果染色偏堿，原是紫紅色的中性顆粒則染成深藍色，造成識 別困難。沖洗須用中性水，雖亦可用自來水 （但不能保持穩定）。
4．對所用染液應進行預染試驗，新配制的染液放置一段時間后其中的美藍逐漸氧 化成天青B ，天青B 對細胞核的著色效果比美藍好，因此，瑞氏染液放置時間越長染色 效果越好，臨床上稱之為成熟。判斷染液成熟程度的簡易方法是用正常血片做預染 試驗，先用低倍鏡觀察載有染液的血片，認為著色滿意后，再按照染色后沖洗順序zui后 用油鏡鏡檢，這樣不僅可了解染液的成熟程度，而且還可以選擇合適的染色時間，供臨 床標本染色時參考。
5．染液與緩沖液的比例要適當，以1∶27 為宜。一般說來緩沖液稀釋度愈大，染色 時間愈長，細胞著色愈勻稱、鮮艷。緩沖液和染液量要充足，否則染液很快蒸發，染料 沉淀于細胞上，使細胞深染而無法檢查。細胞較多較厚的涂片 （如紅細胞增多癥） 染液 應多些。細胞較少的涂片染液應少些。
6．染色時間與染液濃度、室溫高低、細胞多少有關，染液愈淡，室溫越低，細胞 愈多，所需時間越長，應適當增加染液濃度，因此必須根據情況靈活掌握。
7．染色良好的血膜片，外觀呈淺紅色，紅細胞呈粉紅色，白細胞核呈暗紫紅色， 染色質結構能辨，粒細胞的顆粒呈固有種異顏色。
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