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腎小管上皮細胞株試驗方法
點擊次數:1147 更新時間:2015-12-16

    目前大量關于腎的毒理學、藥物測試等研究需要腎小管上皮細胞株。但是,細胞株部分基因的變異或缺失與正常細胞存在差異,原代細胞在表達正常細胞生理狀態下則更顯優勢[1],因此尋求一種有效的腎小管上皮細胞的原代培養尤為重要。

1 材料與方法

1.1 材料

    實驗動物:SD 大鼠,雄性,4~5 周齡;昆明小鼠,4~5 周齡。

    1.2 主要試劑胎 牛 血 清(杭 州 四 季 青),DMEM-F12 1:1 培 養 基(Thermo),Ⅰ型膠原酶 ( 美國 Sigma),胰酶消化液,雙抗(青霉素 - 鏈霉素溶液 100×),兔抗人角蛋白 CK18(Bioss),SABC免疫組化染色試劑盒,DAB 顯色試劑盒。

1.3 試驗方法

1.3.1 腎小管節段分離

    大鼠和小鼠實驗前均禁食 12 小時,進水自由。脫臼處死,75% 乙醇中浸泡 5min.在超凈臺中取出腎,置于冷的含雙抗的 PBS 溶液中,去除腎蒂和包膜,將腎皮質剪碎大小至1mm3,PBS 洗滌 3 次后,放置 80 目不銹鋼篩網上,用 50ml滅菌注射器柄輕輕研磨,PBS 液充分清洗后的網下液轉移至100 目不銹鋼篩網中,將 100 目篩網倒置 PBS 沖洗取網上液。

    取得的液體經 1500r/min 離心 8min,棄去上清液在沉淀中加入Ⅰ型膠原酶,分別 37℃振蕩消化,振蕩消化時間分三組,分別為 20min,25min,30min.雙倍體積 DMEM-F12 培養基中和后,1500r/min 離心 8min.

1.3.2 腎小管上皮細胞的原代培養及傳代

    在 上 述 離 心 后 的 沉 淀 中 加 入 含 10% 胎 牛 血 清 的DMEM-F12 培養基,輕輕吹打混勻。接種到 25mL 培養瓶中。培養瓶靜置于 37℃ 5% 的 CO2培養箱中培養。24h 后補加培養基。72h 后換液。之后隔天換液。原代培養 4~6 天,細胞貼滿瓶底,用胰蛋白酶消化并傳代培養。

1.3.3 換液后廢液的有效利用

    72h 換液時,將廢液至于新的培養瓶中,添加適當的培養基,靜置于 37℃ 5% 的 CO2 培養箱中培養。視細胞貼壁狀態可于 48h 半換液,72h 全換液。

    1.3.4 腎小管上皮細胞的鑒定1.3.4.1 倒置顯微鏡下對細胞的形態及生長進行觀察1.3.4.2 免疫細胞化學法(SABC 法)細胞爬片后,PBS 輕輕沖洗。4% 多聚甲醛固定 60min.

    吸去多聚甲醛后空氣干燥 5min,加入 30%H2O2純甲醇(1:50)混合液浸泡 30min,滅活內源性過氧化物酶,PBS 沖洗;加 5%BSA 封閉液,室溫條件 20min,吸去多余液體;加兔抗人角蛋白 CK18(1:200),PBS 作為陰性對照。37℃下孵育 1h,PBS 洗滌 3 次。加入生物素化山羊抗兔 IgG(博士德生物)室溫 20min,PBS 洗滌 3 次,加 SABC 37℃反應 20min,洗片,使用 DAB 試劑盒(AR1002)顯色,蘇木素輕度復染,中性樹膠封片。

2 結果

    2.1 SD 大鼠和昆明小鼠腎小管上皮細胞分離生長和傳代的比較

    SD 大鼠剛分離的以腎小管節段以及單個游離腎小管上皮細胞,在倒置顯微鏡下圓形透亮,體積較大,強折光性好。12h 后部分細胞開始貼壁,以腎小管節段周圍聚集密集。24h 后細胞大量貼壁且有少量上皮樣細胞爬出,72h 細胞緊密銜接呈典型鵝卵石鋪路樣,折光性好。SD 大鼠傳代至第二代時開始有細胞漂浮,傳代到第三代時大量凋亡。昆明小鼠剛分離的腎小管以腎小管節段居多,形態與大鼠相似。貼壁速度比 SD 大鼠略慢,但生長速度快,培養 72h 已長滿瓶底。傳代至第三代時依舊有大量細胞緊貼瓶底。

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